一、细胞
1.选择适当的细胞接种浓度.
贴壁细胞:考虑到细胞大小不同,建议根据具体情况适当调整细胞的密度布局。
悬浮细胞:一般在96孔板中,每个孔放置10000个细胞,可通过细胞计数的方式来进行布板。
采用状态很好的细胞去铺版,传代太多的细胞不宜拿来使用。铺版如果太稀细胞的杀伤不会很明显,太密细胞可能都会死掉,细胞密度多采用10000个/孔.100ul/孔
2.药物浓度和处理时间的设定.
不同类型的细胞对药物的敏感性存在差异。若药物浓度未知,可查阅文献,参考他人的研究结果来初步确定一个较大的范围,计算药物的半数抑制浓度(IC50),并根据IC50值来设定药物的使用浓度。
3.培养时间.
如果要培养48h以上,就换液。(48h换液)
4.无菌操作
在进行MTT或CCK8实验时,请务必进行无菌操作,因为一旦污染会严重影响吸光值的准确性。细菌污染也会导致比色反应的光密度值升高,给实验结果带来干扰。
5.设置对照
在实验过程中,需要设置调零孔、对照孔和加药孔。调零孔中应加入培养基、MTT或CCK-8以及DMSO;对照孔和加药孔均需加入细胞、培养液和MTT或CCK-8。对照孔中需加入溶解药物的介质,通常为DMSO,而加药组则需要添加不同浓度的药物。
6.设置副孔
每个处理组至少设置3个副孔,3-5个都可以.
二、实验步骤
(1)需要做的操作包括收集对数期细胞、调节细胞悬液浓度在1万至2万个细胞/毫升之间,取100微升加入96孔板中。同时,对于96孔板的处理,需要在边缘孔中使用无菌PBS或适当的培养基进行填充。在每个孔中,准备3至5个副孔。
(2)悬浮细胞铺好板放37℃,5%CO2培养箱中静置培养1小时,之后即可加药。药物建议现配现用,采用半比稀释法,培养基配药。(长期保存的药物实用说明书规定的溶液配,例如DMSO,一次性使用的采用培养基稀释药物,达到最终使浓度。)
(3)置37℃,5%CO2孵育到药物处理时间。
(4)在每个孔中加入10μL MTT 溶液(5mg/ml,即0.5% MTT),继续培养4小时。也可以考虑使用CCK-8 替代 MTT,更加方便。
(5)经过4小时处理后,每个孔加入100ul MTT缓冲液,反应至指定时间,以确保结晶物充分溶解。随后,使用酶联免疫检测仪在OD 570nm(经过630nm校准)下测量各孔的吸光值。
三、MMT的配制
我通常建议现配现用MTT,并在过滤后于4℃避光保存。配制好的MTT需要保持无菌,因为MTT对细菌非常敏感。添加到96孔板时可以不避光,或者将操作台上的照明灯关闭。在配制MTT时,我们建议使用PBS溶解,并在60℃水浴中辅以超声处理以帮助溶解。
四、加入MMT
MTT的添加量宁多勿少,10 µl足矣。若某些孔在加入MTT后立即呈现蓝黑色,则说明可能受到污染。在加入MTT之前,建议先在显微镜下观察,查看是否存在孔内的细胞受到了细菌污染。
CKK8使用方法
1、将100ul细胞悬液接种至96孔板中,并置于预热至37℃、5% CO2饱和湿度的培养箱内进行培养。
2、向每个孔中添加10ul的CCK-8试剂。
3、将培养板放入培养箱中培养1-4小时。
4、在450nm波长下测定吸光度,参考波长设定为600nm以上。
OD值的测定
细胞密度较高时测得的吸光度也会偏高,而细胞密度较低时吸光度则会偏低。此外,吸光度值也与细胞状态相关,细胞状态不佳时吸光度值通常较低。细胞数量较少或培养时间较短时,OD值也会偏低。若各孔之间的差异性明显,可能存在污染现象,如空白孔的OD值异常高,则很可能是受到细菌污染的影响。
为了确保实验的准确性,通常会为每个浓度设置5-6个复制孔。在最终统计数据时,可以排除一个最高值和一个最低值,或者剔除那些可能出现的异常数值。这些异常数值的出现可能与多种因素有关,如细胞污染情况、细胞死亡情况、培养液蒸发程度、MTT液的准确使用,以及在37℃和5%二氧化碳的培养箱中孵育时间是否恰当(通常为1-4小时)。这些因素之间存在着紧密的关联。
五、注意事项
1.建议控制细胞的接种密度,尤其对于悬浮细胞。一般来说,每孔10000个左右的细胞数量是合适的,不要过多。特别是对于肿瘤细胞,更要注意避免过高的接种密度,宁少勿多。这样可以确保实验结果的准确性和可靠性。
2."对于MTT和CCK-8实验来说,它们本身就是相对粗略的实验方法,因此在结果中出现小幅波动或误差属于正常现象。"
3.在进行铺板时,务必确保细胞悬液充分混合,并且如果长时间静置,需要用枪头重复吹打几次来达到混合均匀的效果。如果细胞分布不均匀,会导致每孔中的细胞数量不一致,建议每接几个孔就进行混匀操作。移液枪的操作需要熟练,尽量避免不必要的误差。另外,过多的吹散次数也会影响细胞的活力,因此请尽快完成铺板操作。
4. 在进行吹打操作时,需要注意细胞悬液的总量不宜过多。过多的悬液不仅容易造成污染,同时也会导致细胞团不易被吹散。建议将细胞悬液控制在6-7ml左右为宜。若悬液量过少,容易产生大量气泡,影响实验的进行。
5.吸液时应将吸头放置于悬浮液底部,稍微提起一点,而在吹液入管时则要保持接近液面,以避免产生气泡。
6.每块板加完后记得晃动培养板,使得细胞能分散的均匀些,铺好板之后精置2min,静下观察细胞分布均匀度以及每孔细胞量是否大概一致。
7.免边缘效应指的是在96孔板中,四周一圈的孔通常只用作空白对照,不应该培养细胞,否则这四排数据可能会出现偏高或偏低的情况。在最外侧一圈的孔中,务必添加水、PBS或培养液,只要能够有效防止蒸发即可。
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